（貨號：WLE5003）
原理概述：
本試劑盒基于一種常溫恒溫核酸快速擴增技術：在常溫恒溫下，重組酶和引物形成蛋白/單鏈核苷酸的復合體Rec/ssDNA，在輔助蛋白和單鏈結合蛋白SSB的幫助下，侵入雙鏈DNA模板；在侵入位點形成D-loop區域，并開始對DNA雙鏈進行掃描；待找到與引物互補的目的區域后，復合體Rec/ssDNA解體的同時，聚合酶也結合到引物的3’末端，開始鏈的延伸。本試劑盒在39 oC下，依賴核酸外切酶的作用，加入根據模版設計的特異的分子探針，使用熒光監測設備能實現對目標片段擴增過程的實時監控。
引物設計：
建議使用長度在30-35 bp的引物，引物過短會影響擴增速度和檢測靈敏度；引物設計避免形成二級結構而影響擴增；擴增子長度建議在150-300 bp，通常不超過500 bp。
熒光探針設計：
探針序列不與特異性引物識別位點重疊，長度為46-52 nt，序列避免回文序列、內部二級結構和連續的重復堿基。探針共有四個修飾位點：距離5’端的≥35 nt的中部位置標記一個dSpacer（四氫呋喃，THF），作為核酸外切酶的識別位點；THF位點的上游標記一個熒光基團，下游標記一個粹滅基團，兩個基團的間距為2-4 nt；THF距離3’末端≥15 nt，并且3’末端標記一個修飾基團，例如胺基、磷酸基團或C3-Spacer。
試劑盒組成：
100T/盒
| 組成 | 含量 |
| C buffer | 1 mL×2管 |
| L buffer | 500 μL×1管 |
| P-core | 1.2 mL×1管 |
| E-core | 60 μL×1管 |
| B buffer | 300 μL×1管 |
| 使用說明書 | 1份 |
試劑盒儲存：
運輸條件：低溫運輸；
儲存條件：儲存溫度 ≤ -20 oC，避光保存，避免重壓、反復凍融；
操作步驟：提前將試劑盒所需組分取出，冰上或低溫下融化（C buffer可室溫融化），震蕩混勻。
1) 向無菌0.2mL PCR管中加入20 μL C buffer、5 μL L buffer；
2) 加入2 μL上游引物、2 μL下游引物和0.6 μL探針，再加入1.5μL dNTPs(10 mM)；
3) 向反應管中加入12 μL P-core和0.6 μL E-core，（步驟1~3可以混合后再分裝至反應管中）；
4) 向反應管中加入3.8 μL核酸模板；
5) 最后向反應管中加入2.5 μL B buffer并充分混合（加入B buffer反應立即被啟動）；混勻后，將反應液甩（或快速離心）至管子底部，然后立即將反應管放入熒光檢測設備中。熒光檢測程序設置為：恒溫39 oC；每30 s采集一次熒光信號；反應時間20 mins。
注：如使用ABI系列PCR儀，請務必于passive reference和quencher處均選擇“none”。
體系配制
| 組分 | 體積（μL） |
| C buffer | 20
5 |
| L buffer | |
| P-core | 12 |
| E-core | 0.6 |
| dNTPs(10 mM) | 1.5 |
| 下游引物(10 μM) | 2 |
| 下游引物(10 μM) | 2 |
| 探針(10 μM) | 0.6 |
| DNA模板 | 3.8 |
| B buffer | 2.5 |
| 總體積 | 50 |
| N：陰性對照； P：正對照 |
注意事項：
- 為保證液體試劑組分活性，請保證儲存溫度 ≤ -20 oC；試劑使用時請保持低溫，避免高溫放置過長時間；
- 在進行反應時請注意避免微量核酸染，并設置空白對照實驗組。
