（貨號：WLRE5003）
原理概述：
本試劑盒基于一種常溫恒溫核酸快速擴(kuò)增技術(shù)：在常溫恒溫下，特殊修飾的反轉(zhuǎn)錄酶利用特異性引物DNA和模板RNA合成cDNA鏈，反應(yīng)體系中的重組酶、單鏈DNA結(jié)合蛋白和DNA聚合酶以新合成的cDNA鏈為模板進(jìn)行快速核酸擴(kuò)增反應(yīng)。本試劑盒在42 oC下，依賴核酸外切酶的作用，加入根據(jù)模版設(shè)計(jì)的特異的分子探針，使用熒光監(jiān)測設(shè)備能實(shí)現(xiàn)對目標(biāo)片段擴(kuò)增過程的實(shí)時(shí)監(jiān)控。適用于實(shí)驗(yàn)室級別的RNA擴(kuò)增以及其他檢測用途的RNA擴(kuò)增使用。
引物設(shè)計(jì)：
建議使用長度在30-35 bp的引物，引物過短會影響擴(kuò)增速度和檢測靈敏度；引物設(shè)計(jì)避免形成二級結(jié)構(gòu)而影響擴(kuò)增；擴(kuò)增子長度建議在150-300 bp，通常不超過500 bp。
熒光探針設(shè)計(jì)：
探針序列不與特異性引物識別位點(diǎn)重疊，長度為46-52 nt，序列避免回文序列、內(nèi)部二級結(jié)構(gòu)和連續(xù)的重復(fù)堿基。探針共有四個(gè)修飾位點(diǎn)：距離5’端的≥35 nt的中部位置標(biāo)記一個(gè)dSpacer（四氫呋喃，THF），作為核酸外切酶的識別位點(diǎn)；THF位點(diǎn)的上游標(biāo)記一個(gè)熒光基團(tuán)，下游標(biāo)記一個(gè)粹滅基團(tuán)，兩個(gè)基團(tuán)的間距為2-4 nt；THF距離3’末端≥15 nt，并且3’末端標(biāo)記一個(gè)修飾基團(tuán)，例如胺基、磷酸基團(tuán)或C3-Spacer。
試劑盒組成：
100T/盒
| 組成 | 含量 |
| C buffer | 1 mL×2管 |
| L buffer | 500 μL×1管 |
| P-core | 1.2 mL×1管 |
| E-core | 60 μL×1管 |
| B buffer | 300 μL×1管 |
| 使用說明書 | 1份 |
試劑盒儲存：
運(yùn)輸條件：低溫運(yùn)輸；
儲存條件：儲存溫度 ≤ -20 oC，避光保存，避免重壓、反復(fù)凍融；
操作步驟：提前將試劑盒所需組分取出，冰上或低溫下融化（C buffer可室溫融化），震蕩混勻。
1) 向無菌0.2mL PCR管中加入20 μL C buffer、5 μL L buffer；
2) 加入2 μL上游引物、2 μL下游引物和0.6 μL探針，再加入1.5μL dNTPs(10 mM)；
3) 向反應(yīng)管中加入12 μL P-core和0.6 μL E-core，（步驟1~3可以混合后再分裝至反應(yīng)管中）；
4) 向反應(yīng)管中加入3.8 μL核酸模板；
5) 最后向反應(yīng)管中加入2.5 μL B buffer并充分混合（加入B buffer反應(yīng)立即被啟動）；混勻后，將反應(yīng)液甩（或快速離心）至管子底部，然后立即將反應(yīng)管放入熒光檢測設(shè)備中。熒光檢測程序設(shè)置為：恒溫42 oC；每30 s采集一次熒光信號；反應(yīng)時(shí)間20 mins。
注：如使用ABI系列PCR儀，請務(wù)必于passive reference和quencher處均選擇“none”。
體系配制
| 組分 | 體積（μL） |
| C buffer | 20
5 |
| L buffer | |
| P-core | 12 |
| E-core | 0.6 |
| dNTPs(10 mM) | 1.5 |
| 下游引物(10 μM) | 2 |
| 下游引物(10 μM) | 2 |
| 探針(10 μM) | 0.6 |
| DNA模板 | 3.8 |
| B buffer | 2.5 |
| 總體積 | 50 |
| N：陰性對照； P：正對照 |
注意事項(xiàng)：
- 為保證液體試劑組分活性，請保證儲存溫度 ≤ -20 oC；試劑使用時(shí)請保持低溫，避免高溫放置過長時(shí)間；
- 在進(jìn)行反應(yīng)時(shí)請注意避免微量核酸染，并設(shè)置空白對照實(shí)驗(yàn)組。
