Ibrahim等從M節段的高度保守的區域設計了兩對PCR引物用于RT-PCR和巢式RT—PCR，所擴增的序列為G2糖蛋白基因的一部分。由于在GenBank中只能查到ZH—501和ZH—548M12毒株M節段的全序列，但是可以得到其他24株毒株的部分核苷酸序列；當這些從26個不同的毒株中已知的核苷酸被比對時，從90—1711bp重疊部分有95．5％一100％的同源性，表明這一區域在RVFV里面是高度保守的。Battles等也已表明這一區域在來自不同宿主的6個非洲國家超過34年的收集到的22分離株間是高度保守的。盡管在這項研究中使用的引物只在一株裂谷熱病毒中被測試，Ibrahim等預言這些引物如果不是全部但也可

能擴增大部分RFV病毒株，因為這些引物是在高度保守的區域內選取的。另一方面，這些引物同非裂谷熱的其他白蛉熱病毒序列的同源性較低，暗示了同其他白蛉熱病毒應該沒有交叉反應性。

 

    Sall等在RVFV的S節段設計了保守的寡核苷酸引物，建立了一管巢式RT-PCR方法，當RVRV人為地用人正常血清進行系列稀釋時，使用簡單的RT-PCR和巢式RT-PCR分別可以檢測到小50個PFU和0．5個PFU。RT-PCR方法對于檢測試驗感染的小鼠和駱駝的血中的裂谷熱病毒RNA是有效的，并且發現巢式RT-PCR比病毒分離方法更為靈敏。這一方法被成功地運用于1998年毛里塔尼亞暴發時人的病例的檢測。同時作者指出，血清學方法（1sM和IgG捕獲ELISA）在用于病毒感染晚期收集的樣品的檢測時是適當的；而應用早期樣品進行診斷時，RT-PCR或者病毒分離是應當的。當此方法同IgG抗體檢測相結合時，與病毒分離（Ⅵ）方法的符合率可以達到100％，可以與IgG檢測結合被作為RFV早期疑似病例的常規檢測方法。

 

    Espach等也建立了一管法RT-PCR方法檢測早期血清或者血液樣品中的RVFV，擴增序列位于病毒的M節段的糖蛋白基因，檢測靈敏度比Sail等所建立的巢式RT-PCR方法高，可以達到0．25 TCID5。，相當于0．17PFU。

 

    非常值得注意的是試驗的靈敏度依賴于幾個因素，如樣品來源、核酸提取方法、RT—PCR擴增和熱循環條件等，在不同的實驗室使用的條件可能都需要優化。例如從蚊子中提取裂谷熱病毒RNA的方法，盡管可能在25只或50只感染的蚊子當中檢測一個感染的蚊子（只有當RNA樣品用酚：三氯甲烷重新提取，并且用異丙醇重沉淀時），使用10只或者更少的蚊子群體避免了RT-PCR抑制劑，但是如果使用更多的蚊子樣品，可能需要增加酚；三氯甲烷或改變RNA提取程序。

 

    Real-timePCR方法 Garcia等首先運用Real—time PCR中的TaqMan技術建立了檢測RVFV的方法，目的片段位于NSs區域。使用從含有目的基因的質粒體外轉錄合成的RNA建立了標準曲線，Real-timeRT-PCR用從感染的Vero細胞得來的RVFV進行了評估，發現這一方法對RVFV是特異的，并且被成功地運用于感染了RVFV的動物血清樣品中病毒基因組的檢測，靈敏度為可以檢測到50—100個拷貝（用人工合成的RNA進行評估）和10 TCIDs。每毫升的病毒量；并且運用此方法評估了抗病毒藥物的抗病毒效果。另外，Drosten等也建立了能夠鑒別病毒性出血熱相似癥狀的幾種不同病毒的Real-timePCR方法，其中包括使用Taq—Man技術檢測RVFV，所設計的目的擴增片段位于G2基因。Real-timePCR作為一項RVF早期確診和隨后的抗病毒治療評價的常規檢測方法將十分有用。