缺血性中風是常見的危害人類神經系統的疾病， 占比例較大。PKC-MARCKS 信號轉導系統腦 缺血后被激活，豆蔻酰化蛋白激酶 C（MARCKS）在 神經功能和神經疾病中扮演重要的角色，其為蛋白 激酶 C（protein kinase C，PKC）的特異性底物蛋白。 MARCKS 能調節大腦神經元軸突生長、內吞和胞吐 及突觸可塑性等基本過程，揭示 MARCKS 蛋白在一 系列生理過程是一個*的參與者，參與了大腦 皮層的發育與衰老相關的認知能力下降等過程。目 前，已知的關于 MARCKS 的調節機制均與 PKC 磷酸 化有關。

1 材料和方法

1.1 動物

健康雄性 SD 大鼠 80 只，SPF 級，體質量 250～ 300 g，黑龍江中醫藥大學藥物安全性評價中心提供， 動物許可證號 SYSK（黑）2013-012。飼養于溫度 （20±2）℃、相對濕度 40%～42%環境，12 h 光照， 自由攝食飲水。

1.2 藥物

*（黃芪 30 g、丹參 20 g、水蛭 15 g、地 龍 15 g 等），黑龍江中醫藥大學附屬醫院中藥房 提供，批號 170301；*片，哈藥集團三精明水 藥業有限公司，批號 。

1.3 主要試劑與儀器

兔抗 MARCKS（20661-1-Ap，Proteintech），兔 抗 p-MARCKS（11992，CST），山羊抗兔 IgG（H+L） HRP（天德悅 S004），山羊抗小鼠 IgG（H+L）HRP （天德悅 S001），GAPDH 鼠單抗（天德悅 TDY042）， 超純RNA提取試劑盒（CWbio.Co.Ltd，Cat#CW0581）， HiFi-MMLV cDNA 鏈合成試劑盒（CWbio.Co.Ltd，Cat#CW0744）。渦旋振蕩儀（其林貝爾 QL-902）， 離心機（Eppendorf Centrifuge 5415D），分光光度計 （Therno Scientific，NANODROP 2000），熒光定量 PCR 儀（Applied Biosystems，ABI7500），Fresco 低 溫冷凍離心機（ Thermo ）， MultiSkan3 酶標儀 （Thermo），Mini P-4 電泳槽（Cavoy）。

1.4 分組及給藥

實驗大鼠按隨機數字表法分為假手術組、模型 組、陽性藥組和中藥組，其中假手術組 6 只，其余 3 組各 24 只。根據人與動物給藥劑量比例換算，大鼠 用藥劑量＝人用藥劑量×0.018÷200 g。中藥組給予 *（2.6 mg/mL）藥液灌胃，陽性藥組給予尼 莫地平（3 mg/mL）藥液灌胃，假手術組和模型組給 予等體積生理鹽水灌胃。給藥體積 10 mL/kg，每日 1 次，連續 8 d。模型組、中藥組和陽性藥組根據缺血 2 h 再灌注后時間不同隨機分為再灌注后 6、24、72 h 和 7 d 共 4 個亞組。

1.5 造模

第 8 日給藥 1 h 后開始造模。采用 Zea Longa 線 栓法制作大鼠腦缺血損傷動物模型，即大腦中動脈 阻塞模型。大鼠腹腔注射 10%*（35 mg/kg） 麻醉，仰臥位固定，于頸部正中線處做一縱切口，分 離右側頸總動脈（CCA）、頸外動脈（ECA）和頸內 動脈（ICA）。然后在近心端結扎 CCA、ECA，用小 暫時夾閉 CCA 遠心端近分叉部，然后在 CCA 近心端距分叉部4 mm剪一小口，將栓線插入到CCA， 輕推栓線達分叉處，松開小，從血管分叉處進 入 ICA，從分叉處插入深度約 18 mm，于 CCA 遠心 端用細線結扎，消毒后縫合傷口。術后 2 h 將栓線拔 出約 1 cm，行再灌注。假手術組大鼠不插入栓線，其 余步驟同其他組。

1.6 神經功能缺損評分

參照 Zea Longa 5 分制評分標準對成模大鼠進 行初選：無神經缺損癥狀，0 分；不能充分伸展左側 前肢，1 分；行走時身體向左側轉圈，2 分；行走時身體向左側傾倒，3 分；不能自發行走，意識水平喪 失，4 分。選取 1～3 分者，將不合格大鼠剔除，通過 隨機抽樣原則補齊動物數并重新造模。

1.7 標本處理

所有實驗組各取 2 只大鼠行腦組織 HE 染色，腦 組織標本制作經心臟灌流。大鼠腹腔注射 10%水合氯 醛（35 mg/kg）麻醉，先灌注生理鹽水約 100 mL，再 灌注 4%多聚甲醛緩沖液。灌注固定完成后，迅速剪 取大鼠頭部，用彎鉗小心將缺腦組織剝離，切取 2 mm2 缺血區腦組織，4%多聚甲醛緩沖液 4 ℃固定 24 h， 組織脫水、透明及浸蠟，常規脫水、石蠟包埋、切片， HE 染色。各組余下 4 只大鼠，其中 2 只用于大鼠腦 組織 Western blot 檢測，另外 2 只用于大鼠腦組織 RT-PCR 檢測。模型大鼠麻醉后冰上斷頭取腦組織， 剝離腦組織至冰上，刀片切取缺血區腦組織，置于凍 存管中液氮保存，提取總蛋白及總 RNA 備用。

1.8 Western blot 檢測豆蔻?；鞍准っ?C 及其磷酸化蛋白表達

將缺血區腦碎，提取總蛋白。加裂解液， 腦組織 15 000 r/min 勻漿 10 s，冰上孵育 20 min，4 ℃、 13 000 r/min 離心 20 min，取上清液，應用 BCA 法蛋 白定量，酶標儀讀取 OD 值，分裝后置于-80 ℃冰箱 保存。以 RIPA 調整蛋白濃度，根據目的蛋白分子量， 配制 12%分離膠，濃縮膠濃度為 5%，20 μg/孔上樣， 通過預染蛋白 Marker 確定電泳停止時間，然后進行 轉模和染色，觀察轉膜效果。用 3%BSA-TBST 稀釋 MARCKS、p-MARCKS 蛋白，濃度分別為 1∶4000 和 1∶500，室溫孵育 10 min，4 ℃過夜。第 2 日膜處 理后曝光，顯影 2 min，定影。拍照保存圖像，分析 軟件測定條帶光密度值，以光密度值代表蛋白的相對 表達量。

1.9 RT-PCR 檢測豆蔻酰化蛋白激酶 C mRNA 表達

用超純 RNA 提取試劑盒提取組織樣本中總 RNA，實驗操作按試劑盒說明書進行。取 5 μL RNA，1%瓊脂糖凝膠進行電泳，檢測 RNA 的完整性。設計 引物 MARCKS mRNA，用 GAPDH 作內參。引物設 計見表 1。用 UltraSYBR Mixture（With ROX）進行 擴增，實驗操作嚴格按產品說明書進行。擴增步驟： 95 ℃、10 min，95 ℃、15 s，60 ℃、60 s，共 45 個 循環。取 5 μL RNA，1%瓊脂糖凝膠進行電泳。選取 樣本 cDNA 進行 5 倍梯度稀釋，稀釋后樣品各取 2 μL 作為模板，分別用目的基因引物和內參基因引物進行 擴增，同時 60～95 ℃進行融解曲線分析，儀器自動 繪制出對應的內參基因和目的基因的標準曲線。根據 RT-PCR 原始檢測結果，用 2-ΔΔCt 法分析基因的相對表 達量。

1.10 統計學方法

采用 SPSS23.0 統計軟件進行分析。實驗數據以 — x±s 表示，多組間比較用方差分析，組間兩兩比較用 LSD 法。P＜0.05 表示差異有統計學意義。

2 結果

除假手術組外，其余大鼠自缺血再灌注后 6 h 起 即有明顯的神經功能缺損表現，多數大鼠出現患側肢 體屈曲內收、雙側伸出不對稱的癥狀，缺損癥狀明顯 者多出現行走時向患側轉圈，癥狀越重則旋轉直徑越 小，可出現行走時追尾。模型組大鼠神經功能評分缺 血再灌注后各時間點整體水平呈下降趨勢，中藥組、 陽性藥組較模型組整體評分降低，再灌注后 72 h 中藥 組和陽性藥組較模型組差異有統計學意義（P＜ 0.05），再灌注后 7 d 中藥組較模型組差異有統計學意 義（P＜0.05）。可見大量紫色深染的凋亡小體，炎性細胞及膠質浸 潤，增生明顯；陽性藥組大鼠較模型組神經元水腫有 所減輕，細胞周圍間隙有所減輕，網格排列情況較輕， 可見少量紫色深染的凋亡小體；中藥組大鼠較模型組 神經元水腫減輕，細胞周圍間隙減小，未見網格排列 情況，未發現大空泡；中藥組和陽性藥組大鼠再灌注 后 72 h 較模型組形態差異，神經元損傷減少， 神經元數量增加，神經元腫脹明顯減輕，可見少量紫 色深染的凋亡小體。

3 討論

氣虛血瘀夾痰是缺血性中風主要病機。氣虛 為本，血瘀為標，瘀血既成，影響氣生血及行血，又 使腦絡瘀阻加重。血瘀是缺血性中風的病理核心，氣 虛是本病的根源；痰是臟腑功能失調的一種病理產 物，亦是導致缺血性中風的基本病理因素之一。故缺 血性中風治以益氣活血、祛痰通絡，則血行氣旺，血 足氣暢，絡通風消，諸癥。*具有益氣活 血、化瘀祛痰、通經活絡功效。方中黃芪為君藥，性 甘溫，大補元氣，氣足則血生，氣旺促血行；輔以水 蛭、地龍破血逐瘀、通經活絡；丹參補血、活血化瘀； 水蛭、地龍與丹參等同用，旨在祛瘀通絡、活血化瘀 而不傷正。諸藥合用，共奏益氣活血、祛瘀化痰、通 經活絡功效。

 

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