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Y190 感受態細胞操作方法

時間:2024/8/21閱讀:257
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Y190 感受態細胞操作方法:  


1.Y190 感受態細胞100ul*50規格取100μl冰上融化的DH5α感受態細胞,加入目的DNA(質?;蜻B接產物)并輕輕混勻,冰上靜置25分鐘。  隨后,為了確保DNA能夠有效進入感受態細胞,我們需要執行一個關鍵的熱激步驟。將含有DNA的感受態細胞混合物迅速轉移到預先加熱至42°C的水浴中,精確計時90秒。這一短暫的高溫處理能夠暫時性地改變細胞膜的通透性,允許外源DNA通過。完成熱激后,立即將試管重新放回冰上,靜置2-3分鐘,使細胞膜恢復其原有的穩定性,防止DNA的泄漏。


接下來,為了復蘇細胞并表達抗性基因(如果質粒攜帶的話),需要向管中加入800μl無抗生素的LB培養基,并置于37°C搖床中,以200-250rpm的速度溫和振蕩培養45分鐘至1小時。此過程中,細胞開始分裂并表達任何可能已轉入的質粒上的基因,包括可能賦予抗生素抗性的基因。


培養結束后,根據實驗需求,我們可以將細胞懸液進行適當稀釋,然后取一定體積(如100μl)涂布到含有相應抗生素的LB瓊脂平板上。使用無菌的玻璃涂布器輕輕均勻地涂抹,確保細胞均勻分布。之后,將平板倒置放在37°C恒溫培養箱中培養過夜,通常為12至16小時。


次日,觀察平板上菌落的形成情況。如果轉化成功,我們將看到清晰可見的、大小均一的菌落生長,這些菌落即為成功導入了目的DNA的DH5α細胞克隆。至此,感受態細胞的轉化實驗便告一段落,接下來的步驟將根據實驗目的進行質粒提取、酶切驗證或進一步的分子生物學分析。


2.42℃水浴熱激45秒,迅速放回冰上并靜置2分鐘,晃動會降低轉化效率。  


3.向離心管中加入700μl不含抗生素的無菌培養基(2YT或LB),混勻后37℃,200rpm復蘇60分鐘。  


4.5000rpm離心一分鐘收菌,留取100μl左右上清輕輕吹打重懸菌塊并涂布到含相應  


抗生素的2YT或LB培養基上。


5.將平板倒置放于37℃培養箱過夜培養。


注意事項:


1.Y190 感受態細胞100ul*50規格感受態細胞在冰上融化。  


2.混入質粒或連接產物時應輕柔操作。  


3.轉化高濃度的質?;蚋咝实倪B接產物可相應減少終用于涂板的菌量。


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