elisa定量試劑盒試驗過程
1、試劑：
（1）考馬斯亮藍試劑：
考馬斯亮藍G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇，加入100ml 85% H3PO4，用蒸餾水稀釋至1000ml, 濾紙過濾。zui終試劑中含0.01%（W/V）考馬斯亮藍G—250, 4.7%（W/V）乙醇，8.5%（W/V）H3PO4。
（2）標準蛋白質溶液：
純的牛血清血蛋白，根據其純度同0.15mol/L NaCl配制成100 ug/ml蛋白溶液。
2. 器材： （1）可見光分光光度計 （2）旋渦混合器
3、標準曲線的制作
試管編號 0 1 2 3 4 5 6
100ug/ml標準蛋白（ml） 0.0  0.1 0.2  0.3  0.4  0.5  0.6
0.15mol/L NaCl （ml） 1  0.9  0.8  0.7 0.6  0.5 ? 0.4
考馬斯亮藍試劑 （ml） 5 5 5 5 5 5 5
搖勻，1h內以0號管為空白對照,在595nm處比色 
A595nm 
以A595nm為縱坐標，標準蛋白含量為橫坐標（六個點為10ug、20 ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug），在坐標軸上繪制標準曲線。
4、樣品中蛋白質含量的測定
另取兩支干凈的試管（做一重復），加入合適濃度的待測樣品，使其測定值在標準曲線的范圍內，測定方法同上，由樣品液的吸光度查標準曲線即可求出含量。
注意事項：
1、如果要求嚴格，在試劑加入后的5~20min內測定光 吸收，因為這段時間內顏色是zui穩定的。
2、若選擇在旋渦混合器上混合，注意不要太劇烈，以免產生大量氣泡而難于消除。
一、實驗目的
用bradford法測蛋白濃度，測定未知蛋白質濃度樣品的吸光度，根據標準曲線得到蛋白質的濃度。配制一組濃度分別為0.10mg/ml，0.08mg/ml，0.06mg/ml，0.04mg/ml，0.02mg/ml，0mg/ml的牛血清蛋白（BSA）溶液，測定這組溶液的吸光度，得到蛋白質濃度對吸光度的一條標準曲線。測定未知蛋白質濃度樣品的吸光度，根據標準曲線得到蛋白質的濃度。
二、bradford法測蛋白濃度實驗過程
1．準備所需的藥品和儀器。
2．計算所需配制的溶液的量。
先配制1mg/ml的牛血清蛋白（BSA）母液，再往母液中加入磷酸緩沖溶液（PBS）配制一組濃度分別為1.0mg/ml，0.8mg/ml，0.6mg/ml，0.4mg/ml，0.2mg/ml的BSA溶液，再將這組溶液稀釋10倍，得到一組濃度分別為0.10mg/ml，0.08mg/ml，0.06mg/ml，0.04mg/ml，0.02mg/ml的BSA溶液。計算*步稀釋各組需要的BSA溶液及PBS溶液的體積。
BSA體積（ul） 100 80 60 40 20
PBS體積（ul） 900 920 940 960 980
BSA濃度（mg/ml） 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2
3．具體操作過程。
用天平稱量1.00g牛血清蛋白（BSA），溶于去離子水中，配成100ml的溶液，溶液的濃度為10mg/ml。用移液槍分別取100ul，80ul，60ul，40ul，20ul的BSA溶液，置于1.5ml的EP管中，再分別加入900ul，920ul，940ul，960ul，980ul的磷酸緩沖溶液（PBS）配成1ml的溶液，震蕩使溶液混合均勻。得到一組濃度分別為1.0mg/ml，0.8mg/ml，0.6mg/ml，0.4mg/ml，0.2mg/ml的BSA溶液。
移液槍分別移取100ul剛配好的一組BSA溶液，置于1.5ml的EP管中，各加入900ul的PBS溶液，震蕩使溶液混合均勻。得到一組濃度分別為0.10?mg/ml，0.08mg/ml，0.06mg/ml，0.04mg/ml，0.02mg/ml的BSA溶液。另外量取1ml的PBS溶液（BSA溶液濃度為0?mg/ml）作對照試驗。
用移液槍分別移取50ul配好的一組BSA溶液，滴加到孔板中，再分別加入200ul的考馬斯亮藍（CBB）。靜置10min后，用酶標儀測得這組BSA溶液的吸光度。
bradford法測蛋白濃度實驗結果
通過用Bradford法測蛋白濃度，得到的吸光度對BSA濃度的關系曲線為y=3.09x+0.6807，R2=0.9541。可以看出吸光度—濃度的關系曲線中R2值較小，即測得的吸光度與濃度的線性不是很好。究其原因可能有以下兩點：一是移液槍的操作不是很熟練，二是移液槍在移液過程中存在著氣泡，使移的液體體積不準確。
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